骨髓中含有充足的造血干細胞，骨髓移植時所采集的骨髓實際上是骨髓和血液的混合產物。由于一次采集骨髓血的量較多，因此為保證患者／供者的安全，需在開始采集前的10～14天分次采集自體外周血，總量約600～800ml，在手術過程中回輸給捐髓者。自體血回輸可以減少供者采髓術中的絕對失血量，且避免使用庫存血，避免各種血源傳染性疾病，如肝炎等的發生。手術過程中應嚴密監測捐髓者的血壓、心率、呼吸等生命體征，予以充分補液，采用晶體液和膠體液交替使用，總補液量為骨髓量的2.5～3倍。

骨髓采集術要嚴格遵守無菌操作規則，一般在無菌手術室進行，以免發生采髓部位感染或者所采集的骨髓被污染。

國外以全麻為主，國內多選擇硬膜外麻醉，后者可保持捐髓者在清醒狀態下進行骨髓采集過程，便于觀察，手術更為安全，而且方便，痛苦小。近年來采用靜脈誘導麻醉聯合局部麻醉進行供者骨髓采集，靜脈應用瑞芬太尼每分鐘0.03～0.05μg/kg持續泵入，局部采用羅哌卡因浸潤麻醉，鎮痛效果好，耐受性好，術后不需臥床，不需留置尿管，如無不適，可即刻出院，減輕了供者的痛苦和負擔。

一般選擇雙側髂前上棘和髂后上棘為穿刺點，必要時，也可加采胸骨。采髓時可選擇普通骨穿針或者Thomas針，采用多部位、多點穿刺，每個位點上抽吸的骨髓量一般不超過10ml。也可以采用不同深淺層面抽吸法，但也需要注意抽吸量不宜過大，否則容易引起骨髓被血液稀釋。一般可先采集髂前上棘約400～500ml，然后翻身，再采集髂后上棘，可以減少翻身時發生休克的可能，如果采集量不大，可直接采集髂后上棘。所采集的骨髓血中含有一些骨髓小顆粒，需采用過濾措施將其去除。國內外很多單位采用Thomas技術過濾，即二次鋼網過濾，網孔分別為0.307mm（62目）和0.201mm（88目），但是采用該方法，骨髓處理的全過程處于開放環境中，容易污染。北京大學血液病研究所采用二次針頭過濾法（先采用12號針頭過濾，然后經9號針頭二次過濾直接注入血液采集袋中備用），方法簡便實用，可單人操作，且處理過程為半封閉，減少污染機會。

北京大學血液病研究所曾報道408例供者主要采用連續硬膜外麻醉進行骨髓采集術，術中回輸預先采集的供者自體血，術中抽取骨髓血的中位數為1108ml，輸血輸液量的中位數為4000ml，采集術中術后無嚴重并發癥，主要不良反應包括低血壓、骨痛和發熱，發生率分別為2.5%、100%及26.5%。證實采用連續硬膜外麻醉下進行骨髓采集術安全可靠，并發癥發生率低，但是穿刺部位疼痛非常常見，一般難以避免。

采集的骨髓血需進行抗凝，一般以含肝素鈉的無菌生理鹽水或RPMI-1640培養液與骨髓以1∶3體積混合抗凝。肝素鈉無菌生理鹽水的配制：每500ml生理鹽水加入31 250U肝素，即每ml含有62.5U肝素。在輸注骨髓時，由于骨髓血中含有肝素，因此需應用魚精蛋白中和肝素（50mg魚精蛋白中和5000U肝素），根據回輸的骨髓血量計算所需魚精蛋白的量。

采集骨髓的同時需要進行細胞計數，異基因移植所需的有核細胞數應不少于1.0×10 ⁸/kg受者體重，一般建議采集量達到3.0×10 ⁸/kg。如果所采集的骨髓需進行進一步處理，如行紅細胞沉降、去除T細胞或者體外培養等，應根據需要調整／增加采集量。

自體骨髓移植時，如果不進行處理，有核細胞數達到1.0×10 ⁸/kg體重即可，如低溫保存，需分離骨髓中的單個核細胞，則所采集的骨髓有核細胞數量應不低于2.0×10 ⁸/kg體重；如果需要進行體外凈化，則建議有核細胞數達到3.0×10 ⁸/kg體重以上（表2-3-1）。

骨髓采集過程中的不良反應以疼痛、失血引起的貧血、一過性低血壓等最為常見，其次是麻醉過程伴發的惡心、嘔吐等，但通常無嚴重不良反應。注意采髓的速度、及時補液、輸血等均可減少或避免不良反應。一些研究比較了供者采集PBSC和骨髓過程的不良反應，結果顯示沒有致命性不良反應，常見不良反應發生率及比較見表2-3-2。這些不良反應在PBSCT供者中多數與G-CSF的應用有關，而在骨髓移植供者中則多數與骨髓采集過程相關。